<?xml version="1.0" encoding="UTF-8"?>
<!DOCTYPE root>
<article xmlns:mml="http://www.w3.org/1998/Math/MathML" xmlns:xlink="http://www.w3.org/1999/xlink" xmlns:xsi="http://www.w3.org/2001/XMLSchema-instance" article-type="research-article" dtd-version="1.1d1" xml:lang="ru"><front><journal-meta><journal-id journal-id-type="publisher">Молодежный инновационный вестник</journal-id><journal-title-group><journal-title>Молодежный инновационный вестник</journal-title></journal-title-group><issn publication-format="print">2415-7805</issn><publisher><publisher-name>Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко" Министерства здравоохранения Российской Федерации</publisher-name></publisher></journal-meta><article-meta><article-id pub-id-type="publisher-id">9740</article-id><article-categories><subj-group subj-group-type="heading"><subject>Conference Proceedings</subject></subj-group></article-categories><title-group><article-title>Evaluation of blood uric acid levels in mice with CRISPR-induced mutation of the Hprt1 gene</article-title></title-group><contrib-group><contrib contrib-type="author"><name name-style="western"><surname>Kurbatova</surname><given-names>Alexsandra Andreyevna</given-names></name><email>alexandrakurbatova03@gmail.com</email><uri content-type="orcid">https://orcid.org/0009-0005-4658-507X</uri><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name name-style="western"><surname>Zhunusov</surname><given-names>Nikita Sergeevich</given-names></name><bio>&lt;p&gt;Research assistant in the Laboratory of Genetic Technologies and Gene Editing for Biomedicine and Veterinary&lt;/p&gt;</bio><email>nzhunu@mail.ru</email><uri content-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-1969-3615</uri><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name name-style="western"><surname>Osipyan</surname><given-names>Sergey Igorevich</given-names></name><email>osipyansergey23@gmail.com</email><uri content-type="orcid">https://orcid.org/0009-0008-4837-3507</uri><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name name-style="western"><surname>Zelentsova</surname><given-names>Alexsandra Sergeevna</given-names></name><bio>&lt;p&gt;Research assistant in the Laboratory of Genetic Technologies and Gene Editing for Biomedicine and Veterinary&lt;/p&gt;</bio><email>zelentsova@bsu.edu.ru</email><uri content-type="orcid">https://orcid.org/0000-0001-6022-0206</uri><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib><contrib contrib-type="author"><name name-style="western"><surname>Skorkina</surname><given-names>Marina Yuryevna</given-names></name><bio>&lt;pre id="tw-target-text" class="tw-data-text tw-text-large tw-ta" data-placeholder="Перевод" data-ved="2ahUKEwjjkrLVoLqEAxUAPxAIHfXOALAQ3ewLegQIDRAU"&gt;&lt;span class="Y2IQFc" lang="en"&gt;Senior Researcher in the Laboratory of Genetic Technologies and Gene Editing for Biomedicine and Veterinary&lt;/span&gt;&lt;/pre&gt;</bio><email>marinaskorkina0077@gmail.com</email><uri content-type="orcid">https://orcid.org/0000-0002-9441-5295</uri><xref ref-type="aff" rid="aff-1"/></contrib></contrib-group><aff id="aff-1">Belgorod State National Research University</aff><pub-date date-type="epub" iso-8601-date="2024-04-19" publication-format="electronic"><day>19</day><month>04</month><year>2024</year></pub-date><volume>13</volume><issue>S1</issue><fpage>232</fpage><lpage>234</lpage><history><pub-date date-type="received" iso-8601-date="2024-02-20"><day>20</day><month>02</month><year>2024</year></pub-date><pub-date date-type="accepted" iso-8601-date="2024-04-17"><day>17</day><month>04</month><year>2024</year></pub-date></history><permissions><copyright-statement>Copyright © 2024, Kurbatova A.A., Zhunusov N.S., Osipyan S.I., Zelentsova A.S., Skorkina M.Y.</copyright-statement><copyright-year>2024</copyright-year></permissions><abstract>&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Abstract.&lt;/strong&gt; The assessment of changes in uric acid levels in an animal model of the orphan disease Lesch-Nyhan allows characterization of the personalized model from the perspective of the principal diagnostic criterion of this syndrome. &lt;strong&gt;The objective is&lt;/strong&gt; to comparatively evaluate the dynamics of uric acid level changes in the blood plasma of mice with a mutation in the &lt;em&gt;Hprt1 &lt;/em&gt;gene. &lt;strong&gt;Materials and Methods.&lt;/strong&gt; The study utilized &lt;em&gt;Hprt1&lt;sup&gt;del8Val&lt;/sup&gt;&lt;/em&gt; mice of both genders, categorized into groups corresponding to the zygosity of the mutation on the X-chromosome: Hemi (hemizygous males), Homo (homozygous females), Het (heterozygous females), WT (wild-type animals of both genders). Blood samples were collected from the cheek of animals at various age intervals, starting from 5 weeks of age up to 15 weeks. Uric acid content analysis was conducted using an enzymatic method with spectrophotometric detection at a wavelength of 513 nm. The raw data were statistically processed, employing an appropriate significance criterion. &lt;strong&gt;Results.&lt;/strong&gt; The uric acid level significantly differed in Hemi group males compared to WT group males at 5, 9, and 13 weeks by 21.1%, 21.79%, and 28.84%, respectively (p0.05). In females, significant differences in uric acid levels were observed in the Homo group at 5, 6, 10, and 15 weeks by 59.78%, 60.45%, 10.33%, and 37.33%, respectively (p0.05); and in the Het group by 45.01%, 61.68%, 22.05%, and 44.53%, respectively, compared to the control (p0.05). &lt;strong&gt;Conclusion.&lt;/strong&gt; &lt;em&gt;Hprt1&lt;sup&gt;del8Val&lt;/sup&gt;&lt;/em&gt; mice differ from wild-type mice based on the main diagnostic criterion for Lesch-Nyhan syndrome, directly associated with the impairment of HPRT enzyme function. This personalized mouse model is a crucial component in studying metabolic disturbances occurring in Lesch-Nyhan syndrome.&lt;/p&gt;</abstract><kwd-group xml:lang="en"><kwd>Lesch-Nyhan Syndrome</kwd><kwd>Hprt1</kwd><kwd>uric acid</kwd><kwd>orphan diseases</kwd></kwd-group><kwd-group xml:lang="ru"><kwd>Синдром Лёша-Нихана</kwd><kwd>HPRT</kwd><kwd>мочевая кислота</kwd><kwd>орфанные заболевания</kwd></kwd-group></article-meta></front><body>&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Введение. &lt;/strong&gt;Синдром Леша-Нихана (LND) представляет собой тяжелое неврологическое расстройство, вызванное мутациями в гене, кодирующем гипоксантин-гуанозин фосфорибозилтрансферазу (HPRT) [1]. Это редкое Х-сцепленное рецессивное заболевание. Как правило, поражаются мужчины, а гетерозиготные женщины являются носителями (обычно бессимптомными) [2]. Наблюдаемый при данном заболевании дефицит фермента HGprt приводит к характерному нейроповеденческому фенотипу, в котором преобладают дистония, умственная отсталость и недееспособное поведение, приводящее к самоповреждению. [3]. У всех пораженных лиц наблюдается избыточная выработка мочевой кислоты, что увеличивает риск образования камней в почках, почечной недостаточности и подагрического артрита. Аллопуринол эффективно снижает уровень мочевой кислоты для предотвращения почечных осложнений, но не оказывает влияния на поведение [4].&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Известно, что синдром характеризуется дисфункцией дофаминовых нейронов среднего мозга, его структурных повреждений при этом не наблюдается. Данное явление связывается с тем, что дефицит HGprt вызывает специфические нарушения развития нервной системы во время эмбриогенеза, особенно влияя на пролиферацию и миграцию развивающихся дофаминовых нейронов среднего мозга (mDA) [5]&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Распространенность синдрома Леша-Нихана составляет 1-9/1 000 000, а предполагаемая распространенность при рождении составляет от 1/380 000 до 1/235 000 живорождений [2].&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Фермент HPRT необходим для эффективной переработки пуриновых нуклеотидов. Он катализирует восстановительный синтез инозинмонофосфата (IMP) и гуанозинмонофосфата (GMP) из пуриновых оснований гипоксантина и гуанина соответственно, используя 5'-фосфорибозил-1-пирофосфат (PRPP) в качестве сооснования. Дефект HPRT приводит к накоплению его субстратов, гипоксантина и гуанина, которые превращаются в мочевую кислоту (UA) с помощью ксантиноксидазы [6].&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Целью работы &lt;/strong&gt;Сравнительная оценка динамики изменения уровня мочевой кислоты в плазме крови мышей с мутацией гена &lt;em&gt;Hprt1&lt;/em&gt;.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Материалы и методы исследования. &lt;/strong&gt;В эксперименте использовали мышей линии &lt;em&gt;Hprt1&lt;sup&gt;del8Val&lt;/sup&gt; &lt;/em&gt;с делецией триплета TCG в первом экзоне гена &lt;em&gt;H&lt;/em&gt;&lt;em&gt;prt1&lt;/em&gt;, приводящей к удалению валина из восьмого положения аминокислотной последовательности фермента HPRT. Мыши были полученные путём генетического редактирования системой CRISPR/Cas9 штамма CBAxC57Bl6J. В экспериментальную группу вошли самцы гемизиготы (Hemi, n=8), самки гетеро- и гомозиготы (Het и Homo, n=24); контрольная гру ппа состояла из самцов и самок дикого типа (WT) на генетическом фоне CBAxC57Bl6J, синхронизированные по возрасту (n=14). Животных содержали в кондиционированном помещении (приблизительно 20-24C) в 12-часовом цикле света/12-часового затемнения со свободным доступом к пище и водопроводной воде.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Забор крови и анализ содержания мочевой кислоты проводились, начиная с 35-дневного возраста каждые 7-14 дней. Кровь объёмом 300 мкл забирали из лицевой вены, прокалывая стерильной иглой щеку животного и собирая в стерильную пробирку Эппендорфа с 0,1% ЭДТА. Во избежание ложного повышения уровня мочевой кислоты в плазме при инкубации в комнатных температурных условиях [7], пробирку с кровью сразу центрифугировали при 4000 g и 4&lt;sup&gt;о&lt;/sup&gt;C в течение 10 минут. По окончании центрифугирования супернатант (плазму крови) отбирали дозатором со стерильным наконечником и переносили в новую пробирку. Образцы плазмы крови мышей хранились в кельвинаторе при -80&lt;sup&gt;о&lt;/sup&gt;C до проведения их анализа.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Оценку динамики содержания мочевой кислоты в плазме крови исследуемых мышей проводили с помощью спектрофотометрического анализа определения мочевой кислоты стандартным набором реагентов Мочевая кислота Парма (Парма Диагностика, Россия) с использованием аналитического оборудования Epoch 2 для микропланшетов BioTek при детекции в диапазоне длины волны 513 нм [8]. Статистический анализ данных выполнен с использованием пакета анализа GraphPad Prism 8. За критерий достоверности выбран критерий Стьюдента (при параметрическом распределении данных) или Т критерий Вилкоксона (при непераметрическом распределении данных при выполнении числа измерений больше 100) при р0,05.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Результаты исследования. &lt;/strong&gt;Согласно полученным данным в группе самцов достоверные различия в уровне мочевой кислоты выявлена на 5, 9 и 13 неделях постнатального развития на 21,1%, 21,79% и 28,84% соответственно (р0,05) по сравнению с контролем (рис. 1).&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Рис. 1  Динамика изменения концентрации мочевой кислоты у самцов группы Hemi в сравнении с контрольной группой мышей.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;В группе самок достоверные различия в уровне мочевой кислоты установлены на 5, 6, 10, 15 неделях у Homo на 59,78%, 60,45%, 10,33% и 37,33% соответственно (р0,05); у Het 45,01%, 61,68%, 22,05%, и 44,53% соответственно (р0,05) по сраневнию с контролем (рис. 2).&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;Рис. 2  Динамика изменения концентрации мочевой кислоты у самок групп Homo и Het в сравнении с контрольной группой мышей.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Заключение. &lt;/strong&gt;Повышение уровня мочевой кислоты у мышей с делецией в первом экзоне гена &lt;em&gt;Hprt1&lt;/em&gt; свидетельствует о специфических метаболических изменениях, вызванных дисфункцией мутантного белка HPRT со сниженной аффинностью к субстрату. Сравнительный анализ динамики изменения концентрации аналита в плазме крови с возрастом доказывает необходимость такого подхода к изучению метаболических нарушений пуринового обмена у мышей с дисфункцией белка HPRT, так как анализ метаболита пуринового обмена в одной возрастной точке не способен дать полной картины метаболических изменений в плазме крови животных. Полученные данные свидетельствуют о пригодности разработанной персонализированной животной модели для изучения метаболических нарушений синдрома Леша-Нихана, что позволит разработать новые подходы к разработке персонализированной генетической терапии.&lt;/p&gt;&#13;
&lt;p&gt;&lt;strong&gt;Финансирование. &lt;/strong&gt;Работа была финансирована из средств Государственного задания Лаборатории генетических технологий и генного редактирования для биомедициныиветеринарии  FZWG-2021-0016.&lt;/p&gt;</body><back><ref-list><ref id="B1"><label>1.</label><mixed-citation>Reduced levels of dopamine and altered metabolism in brains of HPRT knock-out rats: a new rodent model of Lesch-Nyhan Disease / S. Meek, A. J. Thomson, L. Sutherland [et al.] // Scientific Reports. – 2016. – Т. 6. – С. 25592.</mixed-citation></ref><ref id="B2"><label>2.</label><mixed-citation>New personalized genetic mouse model of Lesch-Nyhan syndrome for pharmacology and gene therapy / V. Kalmykov, P. Kusov, M. Yablonskaia [et al.] // Research Results in Pharmacology. – 2018. – Т. 4. – С. 97-104.</mixed-citation></ref><ref id="B3"><label>3.</label><mixed-citation>Description of the Molecular and Phenotypic Spectrum of Lesch-Nyhan Disease in Eight Chinese Patients / L. Li, X. Qiao, F. Liu [et al.] // Frontiers in Genetics. – 2022. – Т. 13. – С. 868942.</mixed-citation></ref><ref id="B4"><label>4.</label><mixed-citation>Harris J. C. Lesch-Nyhan syndrome and its variants: examining the behavioral and neurocognitive phenotype / J. C. Harris // Current Opinion in Psychiatry. – 2018. – Т. 31. – № 2. – С. 96-102.</mixed-citation></ref><ref id="B5"><label>5.</label><mixed-citation>HGprt deficiency disrupts dopaminergic circuit development in a genetic mouse model of Lesch–Nyhan disease / J. S. Witteveen, S. R. Loopstok, L. L. Ballesteros [et al.] // Cellular and Molecular Life Sciences. – 2022. – Т. 79. – № 6. – С. 341.</mixed-citation></ref><ref id="B6"><label>6.</label><mixed-citation>Torres R. J. Hypoxanthine-guanine phosophoribosyltransferase (HPRT) deficiency: Lesch-Nyhan syndrome / R. J. Torres, J. G. Puig // Orphanet Journal of Rare Diseases. – 2007. – Т. 2. – С. 48.</mixed-citation></ref><ref id="B7"><label>7.</label><mixed-citation>False In Vitro and In Vivo Elevations of Uric Acid Levels in Mouse Blood / T. Watanabe, N. H. Tomioka, S. Watanabe [et al.] // Nucleosides, Nucleotides and Nucleic Acids. – 2014. – Vol. 33. – № 4-6. – P. 192-198.</mixed-citation></ref><ref id="B8"><label>8.</label><mixed-citation>Uric Acid Levels in Tissues and Plasma of Mice during Aging / M. Iwama, Y. Kondo, K. Shimokado [et al.] // Biological and Pharmaceutical Bulletin. – 2012. – Vol. 35. – № 8. – P. 1367-1370.</mixed-citation></ref></ref-list></back></article>
