Medical Scientific Bulletin of Central Chernozemye (Naučno-medicinskij vestnik Centralʹnogo Černozemʹâ)

1990-472X

Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Воронежский государственный медицинский университет имени Н.Н. Бурденко" Министерства здравоохранения Российской Федерации

10072

10.18499/1990-472X-2024-25-1-%p

Assessment of the fertilizing ability of sperm by the content of the tumor necrosis factor-alpha in seminal plasma

Galkovich

Konstantin

kr20211@yandex.ruSosnin

Dmitry

sosnin_dm@mail.ru

13042024

2518491

25042024

2024

Violation of male fertility is more than 40% in the structure of barren marriages. The search for indicator components of seminal plasma with diagnostic value for identifying spermatogenesis disorders is of interest. The purpose of the study is to determine the fertilizing ability of sperm in men by the concentration of tumor necroses factor-alpha (TNF) in seminal plasma. Material and methods. Settlements of sperm of 95 men of reproductive age were investigated: the main group (n = 61) compiled patients with a decrease in sperm concentration and their total content in the ejaculate, a comparison group (n = 34) with normal concentration indicators and the total number of sperm in the ejaculate. The concentration of the TNF was determined by the method of enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using the alpha-TNF-ELISA-BEST test system (A-8756, Vector-Best LLС, Russia). Results. The content of the TNF in the seminal plasma compiled (median and inter-worshiping range) 9.18 [5.61; 14.71] pg/ml, the concentration of this protein in the main group was statistically significantly higher than the similar indicator in the comparison group (p0,00001). The possibilities of applying the concentration of TNF in seminal plasma as a marker impaired ejaculative violation by identifying the value of the positive and negative outcomes of in vitro fertilization (IVF) as a marker. In couples undergoing infertility treatment with the use of ARTs (men of the main group), the largest number of IVF outcome was represented by truly positive results - 55.74%. The diagnostic sensitivity of the method was 80.95%, a diagnostic specificity of 73.68%, diagnostic efficiency of 78.69%. Conclusions. The content of TNF in the seminal plasma of patients with subworical ejaculate statistically significant is higher compared to healthy men. The concentration of TNF in seminal plasma can be used as a criterion for selection of ejaculate for use in the implementation of the programs of the assisted reproductive technologies

tumor necrosis factor-alphaTNFαin vitro fertilizationejaculateseminal plasmaassisted reproductive technologies.

актор некроза опухоли-альфаФНО-αTNFαэкстракорпоральное оплодотворениеЭКОэякулятсеменная плазмавспомогательные репродуктивные технологииВРТ.

1. Корнеев И.А. Сравнительная характеристика параметров эякулята мужчин, обратившихся в центр репродуктивной медицины с 2016 по 2022 г. Урологические ведомости. 2023. 13(1):23-29. DOI: 10.17816/uroved296569

2. World Health Organization (WHO). WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen, sixth edition. Geneva: World Health Organization, 2021.

3. Dabbagh Rezaeiyeh R, Mehrara A, Mohammad Ali Pour A, Fallahi J, Forouhari S. Impact of Various Parameters as Predictors of The Success Rate of In Vitro Fertilization. Int J Fertil Steril. 2022; 16(2):76-84. DOI: 10.22074/IJFS.2021.531672.1134

4. Боташева Т. Л., Тян Ю. А., Линде В. А., Кузьмин А. В., Авруцкая В. В., Фролов А. А., Черноситов А. В. Способ прогнозирования исходов программы ЭКО и ПЭ. Патент на изобретение №2581027 от 10.04.2016.

5. Кончакова Е. А., Авдеева М. Г., Кончакова А. А., Добриев Х. Я. Влияние оппортунистических инфекций на эффективность экстракорпорального оплодотворения у женщин с различным типом бесплодия. Эпидемиология и инфекционные болезни. 2020; 25(1):18-25. DOI: 10.17816/EID35182

6. Башанкаева Ю.Н., Зароченцева Н.В., Краснопольская К.В., Исакова К.М. Эффективность переносов эмбрионов у пациенток в криопротоколах экстракорпорального оплодотворения. Акушерство и гинекология: новости, мнения, обучение. 2022. Т. 10, № 2. С. 23–30. DOI: 10.33029/2303-9698-2022-10-2-23-30

7. Гамидов С. И., Овчинников Р. И., Попова А. Ю., Полозов В. В., Наумов Н. П., Гасанов Н. Г. Эффективность программ вспомогательных репродуктивных технологий в зависимости от характера изменений спермограммы. Андрология и генитальная хирургия 2018;19(2):82-87. DOI:

8. Олефир Ю. В., Монаков Д. М. Клиническое значение морфологии сперматозоидов в выборе метода лечения мужского бесплодия. Экспериментальная и клиническая урология 2021;14(3):127-132; DOI: 10.29188/2222-8543-2021-14-3-127-132

9. Евдокимов В. В., Исаев Н. К., Туровецкий В. Б. Влияние факторов различной природы на фертильность эякулята in vitro. Андрология и генитальная хирургия. 2022;23(1):45-52. DOI: 10.17650/1726-9784-2022-23-1-45-52

10.

10. Первова Ю. В., Старикова Т. В. Влияние экзогенных и эндогенных факторов на мужскую фертильность. Андрология и генитальная хирургия. 2020;21(3):61-68. DOI: 10.17650/2070-9781-2020-21-3-61-68

11.

11. Бржозовский А. Г., Стародубцева Н. Л., Бугрова А. Е., Кононихин А. С., Чаговец В. В., Шатылко Т. В., Гамидов С. И., Тамбиев А. Х., Попова А. Ю., Гасанов Н. Г., Бицоев Т. Б., Франкевич В. Е. Прогностические возможности протеомного анализа семенной плазмы у мужчин с азооспермией. Андрология и генитальная хирургия. 2021;22(3):18-24. DOI:10.17650/1726-9784-2021-22-3-18-24

12.

12. Бухарин О. В., Кузьмин М. Д., Перунова Н. Б., Никифоров И. А., Чайникова И. Н., Иванова Е. В. Диагностический цитокиновый маркер бесплодия мужчин – интерлейкин 4. Клиническая лабораторная диагностика. 2022; 67(3): 151-157. DOI: 10.51620/0869-2084-2022-67-3-151-157

13.

13. Sciorio R., Fleming S. D. Intracytoplasmic sperm injection vs. in-vitro fertilization in couples in whom the male partners had a semen analysis within normal reference ranges: An open debate. Andrology. 2024;12(1):20-29. DOI: 10.1111/andr.13468.

14.

14. Соснин Д. Ю., Галькович К. Р., Кривцов А. В., Гильманов А. Ж. Фактор некроза опухоли α в эякуляте как показатель сниженной фертильности. Урология. 2024;1:80-85. DOI: 10.18565/urology.2024.1.80-85

15.

15. Feng Y., Dai L., Zhang Y., Sun S., Cong S., Ling S., Zhang H. Buyang Huanwu Decoction alleviates blood stasis, platelet activation, and inflammation and regulates the HMGB1/NF-κB pathway in rats with pulmonary fibrosis. J Ethnopharmacol. 2024;319(Pt 1):117088. doi: 10.1016/j.jep.2023.117088.

16.

16. Grzegorski T., Iwanowski P., Kozubski W., Losy J. The alterations of cerebrospinal fluid TNF-alpha and TGF-beta2 levels in early relapsing-remitting multiple sclerosis. Immunol Res. 2022;70(5):708-713. DOI: 10.1007/s12026-022-09303-x

17.

17. Roy R., Dang U. J., Huffman K. M., Alayi T., Hathout Y., Nagaraju K., Visich P. S., Hoffman E..P. A population-based study of children suggests blunted morning cortisol rhythms are associated with alterations of the systemic inflammatory state. Psychoneuroendocrinology. 2024;159:106411. DOI: 10.1016/j.psyneuen.2023.106411.

18.

18. Payan-Carreira R., Santana I., Pires M. A., Holst B. S., Rodriguez-Martinez H. Localization of tumor necrosis factor in the canine testis, epididymis and spermatozoa. Theriogenology. 2012; 77(8):1540-1548. DOI: 10.1016/ j.theriogenology. 2011.11.021

19.

19. Мошкин А. В. Чувствительность и специфичность как клинические индикаторы качества лабораторных исследований. Лабораторная служба. 2020. 9(4): 5 6.

20.

20. Соснин Д. Ю., Галькович К. Р. Способ прогнозирования инфертильности эякулята у мужчин. Патент на изобретение №2785487 от 8.12.2022.