COMPARATIVE ACTIVITY OF VARIOUS CONCENTRATION OF THE MIXED CHLORGEXIDIN-DIOXIDIN COMPONENTS IN RELATION TO PATHOGENIC MICROFLORA

Full Text

Актуальность. В настоящее время гнойные заболевания мягких тканей и раневая инфекция широко распространение во всем мире. Наиболее часто это абсцессы, флегмоны, карбункулы, фурункулез, нагноение послеоперационных и бытовых ран. В настоящее время проблема лечения гнойных ран и заболеваний весьма актуальна. За последние 30 лет медицина далеко шагнула в развитии антибактериальных средств (антибиотиков), однако новых атисептиков, отвечающих запросам клинической практики, создано не было, и до сих пор для местного лечения ран используются старые, хорошо зарекомендовавшие себя антисептики - хлоргексидин и диоксидин, мироместин. Но, в последнее время, за счет прогрессирования внутрибольничной инфекции, а так же появления резистентности некоторых штаммов к данным антисептикам, эффективность их применения при лечении гнойной патологии значительно снизилась. В условиях хирургических стационаров это является одной из основных проблем в лечении пациентов с гнойной патологией. Учитывая сложившиеся тенденции антибактериальной терапии, существует необходимость появления новых антибактериальных препаратов и антисептиков. Цель исследования: подбор оптимального состава компонентов хлоргексидин-диоксидиновой смеси (ХДС), обладающей максимальными эффективными антисептическими свойствами. За основу для создания новой композиции взяты известные антисептики - хлоргексидин и диоксидин. Эти преператы известны более 30 лет и хорошо зарекомендовали себя на российском рынке. Материал и методы исследования. В лабораторных условиях готовили суспензию тест-культуры микроорганизмов в стерильном физиологическом растворе, стандартизировали ее до 1,5*108 КОЕ/мл. Подтверждение содержания клеток в рабочей культуре проводили путем высева на 5% кровяной агар. Определение антимикробной активности композиции проводилось в качественном суспензионном тесте. В образцы данных антисептических средств вносились суспензии культур указанных выше микроорганизмов. Образцы выдерживали при 20±10С в течение 10 минут. После установленной экспозиции кратное кратное количество смеси немедленно нейтрализовали соответствующим способом для проверки бактерицидности и фунгицидности. Через 10 мин 0,5 мл взвеси культуры переносилось в 5 мл жидкой среды для контроля стерильности. После инкубации в термостате при 37ºС 48 часов проводились высевы петлей на сектора соответствующих плотных сред. Испытания проводили в трех повторах. Для контроля соответствующие испытательные суспензии микроорганизмов смешивали с кратным количеством стерильного физиологического раствора. После необходимой экспозиции посевы на питательные среды проводили аналогично основному опыту. Полученные результаты и их обсуждение. Полученные результаты приведены в таблицах 1 и 2. Таблица 1. Рост рост микрофлоры в посевах с добавлением диоксидина и хлоргексидина в различных концентрациях и долевых соотношениях Концентрация ингредиентов Долевые соотношения 1:1 1:5 1:9 5:1 9:1 1% р-р диоксидина+ 0,05% р-р хлоргексидина - - - - - 0,5% р-р диоксидина+ 0,05% р-р хлоргексидина - - - - - 0,1% р-р диоксидина+ 0,05% р-р хлоргексидина - - - - Staphyl. aureus 0,01% р-р диоксидина+ 0,05% р-р хлоргексидина E.Coli - - - - 1 % р-р диоксидина+ 0,025% р-р хлоргексидина - - - - - 1% р-р диоксидина+ 0,005% р-р хлоргексидина - - - - - 1% р-р диоксидина+ 0,0005% р-р хлоргексидина - St. аur.; E.Coli; Pseud.aer. - - - Таблица 2. Сравнительная интенсивность роста коллоний микроорганизмов при использовании различных антисептиков Микроорганизм антисептик Диоксидин 1% Хлоргексидин 0,05% Фурацилин 0,02% ХДС Staphylococcus aureus Рост колоний единичных Рост отсутствует Рост колоний единичных Рост отсутствует Escherichia coli Массивный рост колоний Рост отсутствует Массивный рост колоний Рост отсутствует Pseudomonas aeruginosa Массивный рост колоний Массивный рост колоний Массивный рост колоний Рост отсутствует Данные таблиц показывают, что большинство вариантов концентраций компонентов в ХДС угнетали рост патогенной флоры. Это очень хороший показатель, особенно учитывая то, что использовалась не музейная флора, а выделенная от больных хирургических стационаров. Как известно, такая микрофлора обладает гораздо большей резистентностью к разного рода антибактериальным препаратам, антисептикам, дезинфицирующим средствам. Острая и хроническая токсичность при применении терапевтических доз отсутствует. Хроматографически исследования позволили подтвердить, что в результате смешивания нового химического соединения не образуется. Таким образом, результаты исследований ХДС показывают возможность и необходимость ее использования в хирургической практике для борьбы с раневой и внутрибольничной инфекцией. Рост микрофлоры наблюдается только в пробах с разведениями препаратов ниже рекомендуемых, либо при уменьшении одного из ингридиентов композиции менее 10%. Выводы. Результаты исследования показывают высокую бактерицидную активность ХДС по отношению к патогенной микрофлоре. Действие ХДС на внутрибольничную микрофлору повышает его ценность, как перспективного антисептического средства. ХДС обладает большой широтой терапевтического действия и отсутствием токсичности, что определяет перспективность дальнейшего изучения ХДС .

About the authors

V V Bulynin

Voronezh State Medical Academy

Email: dr.bulinin@mail.ru

V A Nikolayevsky

Voronezh State Medical Academy

V A Syretskikh

Voronezh State Medical Academy

E V Bondarenko

Voronezh State Medical Academy

L M Dementyeva

Voronezh State Medical Academy

References